Kolokwium z mikrobiologii

odbędzie się 16.06.2025 r. (poniedziałek) o godz. 17:30. Sala zostanie podana po ustaleniu przez starostę roku.

Zakres kolokwium obejmuje treści tematyczne wykładów i ćwiczeń.

Ćwiczenie 12.06.2025 – GRUPA 6

Ćwiczenie 13.06.2025 – GRUPA 3

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: dr n. med. Piotr Wieczorek

Ćwiczenie 10.06.2025 – GRUPA 6

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha

Ćwiczenie 9.06.2025 – GRUPA 10

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: dr n. med. Piotr Majewski

Ćwiczenie 5.06.2025 – GRUPA 6

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 2.06.2025 – GRUPA 10

Ćwiczenie 6.06.2025 – GRUPA 3

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 29.05.2025 – GRUPA 6

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 26.05.2025 – GRUPA 10

Ćwiczenie 30.05.2025 – GRUPA 3

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 22.05.2025 – GRUPA 6

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 21.05.2025 – GRUPA 1

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 19.05.2025 – GRUPA 10

Ćwiczenie 23.05.2025 – GRUPA 3

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Materiał dydaktyczny 1

Materiał dydaktyczny 2

Materiał dydaktyczny 3

Ćwiczenie 14.05.2025 – GRUPA 1

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 12.05.2025 – GRUPA 10

Ćwiczenie 16.05.2025 – GRUPA 3

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 12.05.2025 – GRUPA 8

Ćwiczenie 15.05.2025 – GRUPA 4

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 9.05.2025 – GRUPA 2

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Ćwiczenie 5.05.2025 – GRUPA 8

Ćwiczenie 8.05.2025 – GRUPA 4

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Paweł Sacha

Ćwiczenie 28.04.2025 – GRUPA 8

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 25.04.2025 – GRUPA 2

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

Ćwiczenie 23.04.2025 – GRUPA 1

Ćwiczenie 24.04.2025 – GRUPA 4

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Ćwiczenie 18.04.2025 – GRUPA 2

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: dr n. med. Piotr Majewski

Ćwiczenie 14.04.2025 – GRUPA 8

Ćwiczenie 16.04.2025 – GRUPA 1

Ćwiczenie 17.04.2025 – GRUPA 4

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 11.04.2025 – GRUPA 2

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 7.04.2025 – GRUPA 8

Ćwiczenie 9.04.2025 – GRUPA 1

Ćwiczenie 10.04.2025 – GRUPA 4

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: dr hab. n. med. Piotr Wieczorek

Ćwiczenie 4.04.2025 – GRUPA 2

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 31.03.2025 – GRUPA 9

Ćwiczenie 1.04.2025 – GRUPA 7

Ćwiczenie 2.04.2025 – GRUPA 5

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 28.03.2025 – GRUPA 11

Zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa i inne.
3. Pobieranie materiałów do badań przesiewowych (w kierunku nosicielstwa ważnych patogenów).
4. Pobieranie materiałów w kierunku diagnostyki wirusologicznej (badania z zakresu biologii molekularnej).
5. Podłoża transportowe i transportowo-wzrostowe.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 24.03.2025 – GRUPA 9

Ćwiczenie 25.03.2025 – GRUPA 7

Ćwiczenie 26.03.2025 – GRUPA 5

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 21.03.2025 – GRUPA 11

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, antyseptyka, aseptyka, środek dezynfekcyjny, sanityzacja.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja – definicja, cele, zasady wyboru metod sterylizacji.
10. Metody sterylizacji z podziałem i charakterystyką sterylizacji fizycznej, chemicznej i mechanicznej.
11. Metody kontroli dezynfekcji – jakościowe i ilościowe.
12. Metody kontroli skuteczności procesów sterylizacji – wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 17.03.2025 – GRUPA 9

Ćwiczenie 18.03.2025 – GRUPA 7

Ćwiczenie 19.03.2025 – GRUPA 5

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 14.03.2025 – GRUPA 11

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep wrażliwy (W), szczep wrażliwy zwiększona ekspozycja (WZE), szczep oporny (O), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe, metody ilościowe, metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metoda dyfuzyjno-krążkowa, metoda z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metoda rozcieńczeniowa w bulionie, metoda rozcieńczeniowa w agarze, metoda stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk,
• terapia przeciwdrobnoustrojowa, terapia empiryczna, terapia celowana, terapia sekwencyjna, terapia skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania - działanie bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane antybiotyków.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: antybiotyki β-laktamowe, aminoglikozydy, makrolidy, chinolony, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, HLAR, MLSB, VRE, ESBL, KPC, MBL (w tym NDM), OXA-48.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 10.03.2025 – GRUPA 9

Ćwiczenie 11.03.2025 – GRUPA 7

Ćwiczenie 12.03.2025 – GRUPA 5

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 7.03.2025 – GRUPA 11

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące:

1. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej, budowa wirusów.
2. Metody mikroskopowe, barwienie preparatów.
3. Hodowla: podłoża bakteriologiczne – definicja, rodzaje, podziały, zastosowanie.
4. Kolonia bakteryjna/grzybicza – definicja, cechy opisujące morfologię kolonii.
5. Zasady hodowli drobnoustrojów – temperatura, skład gazowy, czas inkubacji.
6. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
7. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
8. Hemoliza i jej rodzaje.
9. Identyfikacja w oparciu o:

• właściwości biochemiczne,
• metody immunologiczne,
• metody molekularne (PCR, RealTime-PCR, hybrydyzacja, PFGE),
• inne - spektrometria mas (MALDI-TOF).

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 4.03.2025 – GRUPA 7

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 24.02.2025 – GRUPA 9

Ćwiczenie 26.02.2025 – GRUPA 5

Ćwiczenie 28.02.2025 – GRUPA 11

Organizacja i regulamin zajęć. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej i grzybiczej.

Zakres tematyczny obejmuje:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii.
2. Mikroskop świetlny – budowa i obsługa mikroskopu podczas oglądania badanych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie preparatów metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia komórki bakteryjnej:

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Metody barwienia preparatów:

• barwienie proste i złożone,
• barwienie pozytywne, negatywne i pozytywno-negatywne.

7. Budowa i charakterystyka bakterii (komórka prokariotyczna), grzybów (komórka eukariotyczna) i wirusów.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

TAKSONOMIA DROBNOUSTROJÓW

Pierwszy wykład z mikrobiologii

odbędzie się 24.02.2025 r. (poniedziałek) w godz. 12:15-13:45

w Auli 0.2 WNoZ.

Pozostałe wykłady będą odbywały się zgodnie z harmonogramem zajęć

.

Pierwsze ćwiczenia odbędą się dla odpowiednich grup (zgodnie z harmonogramem zajęć) w dniach 24.02.2025 r. (gr. 9), 26.02.2025 r. (gr. 5),

28.02.2025 r. (gr. 11), 4.03.2025 r. (gr. 7), 4.04.2025 r. (gr. 2), 7.04.2025 r. (gr. 8), 8.04.2025 r. (gr. 12), 9.04.2025 r. (gr. 1), 10.04.2025 r. (gr. 4), 12.05.2025 r. (gr. 10), 16.05.2025 r. (gr. 3), 22.05.2025 r. (gr. 6).

Ćwiczenia będą odbywały się w sali dydaktycznej Zakładu Diagnostyki Mikrobiologicznej i Immunologii Infekcyjnej.

Na pierwsze ćwiczenia student obowiązany jest:

1. Przyjść ubrany w biały fartuch laboratoryjny z długimi rękawami oraz miękkie obuwie (obowiązuje bezwzględnie zmiana obuwia – nie wolno używać ochraniaczy na buty). Fartuch na czas wszystkich zajęć należy pozostawiać w szatni studenckiej zakładu. Fartuchy po skończonych zajęciach będą poddane utylizacji.
2. Wszyscy studenci przed rozpoczęciem zajęć oczekują przed wejściem do zakładu.