Ćwiczenie 18.12.2024 – GRUPA 1, 2

Zasady pobierania i transportu materiałów biologicznych do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa.
3. Zasady pobierania materiałów w diagnostyce zakażeń układu moczowo-płciowego.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 11.12.2024 – GRUPA 1, 2

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, sterylizacja, antyseptyka, środek dezynfekcyjny.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja:

• definicja,
• cel,
• zasady wyboru metod sterylizacji,
• metody sterylizacji z podziałem na sterylizację fizyczną, chemiczną i mechaniczną,
• charakterystyka i mechanizmy działania metod sterylizacji na drobnoustroje,
• czynniki wpływające na skuteczność sterylizacji.

10. Kontrola procesu sterylizacji:

• wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne,
• zasady kontroli sterylizacji i interpretacja uzyskiwanych wyników.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Ćwiczenie 4.12.2024 – GRUPA 1, 2

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep oporny (R), szczep wrażliwy (S), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe; metody ilościowe; metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metodą dyfuzyjno-krążkową, metodą z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku, (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metodą rozcieńczeniową w bulionie, metodą rozcieńczeniową w agarze, metodą stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk, terapia przeciwdrobnoustrojowa,
• terapia empiryczna, celowana, sekwencyjna, skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania – dz. bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: β-laktamowe, aminoglikozydy, chinolony, makrolidy, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, ESBL, MBL, HLAR, MLSB, KPC, OXA-48, NDM.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 27.11.2024 – GRUPA 1, 2

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe pojęcia: kolonia bakteryjna, podłoże hodowlane.
2. Podział podłóż hodowlanych ze względu na:

• konsystencję: stałe, półpłynne, płynne,
• skład i funkcje: naturalne, półsyntetyczne, sztuczne, proste, wzbogacone, specjalne, wybiórcze, wybiórczo-różnicujące, różnicujące, transportowe, transportowo-wzrostowe.

3. Zasady hodowli drobnoustrojów: zawartość składników odżywczych w podłożu, pH, ciśnienie osmotyczne, temperatura, potencjał oksydo-redukcyjny, czas inkubacji.
4. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
5. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
6. Morfologia kolonii bakteryjnej – cechy ją opisujące.
7. Badanie cech biochemicznych, metody immunologiczne w identyfikacji drobnoustrojów.
8. Inne metody identyfikacji: metody molekularne (PCR, real time-PCR), spektrometria MALDI-TOF.

Prowadzący zajęcia: mgr Łukasz Korczak

Ćwiczenie 20.11.2024 – GRUPA 1, 2

Organizacja i regulamin ćwiczeń. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej, grzybiczej.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii. Zasada działania i zastosowanie.
2. Mikroskop świetlny – budowa i zasady posługiwania się podczas oglądania gotowych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia drobnoustrojów (bakterie, grzyby):

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Podział metod barwienia: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, pozytywno-negatywne.
7. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej oraz wirusów.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Ćwiczenie 21.11.2024 – GRUPA 3

Zasady pobierania i transportu materiałów biologicznych do badań mikrobiologicznych.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Ogólne zasady pobierania i transportu materiałów do badań mikrobiologicznych.
2. Szczegółowe zasady pobierania: moczu, krwi, płynu mózgowo-rdzeniowego, wymazów z górnych dróg oddechowych, plwociny, BAL, wymazy z ran, ropa.
3. Zasady pobierania materiałów w diagnostyce zakażeń układu moczowo-płciowego.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Ćwiczenie 21.11.2024 – GRUPA 3

Dezynfekcja i sterylizacja – metody i kontrola oraz czynniki wpływające na ich skuteczność.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe definicje: dekontaminacja, dezynfekcja, sterylizacja, antyseptyka, środek dezynfekcyjny.
2. Podział metod dezynfekcji.
3. Charakterystyka grup środków dezynfekcyjnych.
4. Cechy charakterystyki środka dezynfekcyjnego.
5. Zasady przygotowywania środków dezynfekcyjnych i przeprowadzania dezynfekcji chemicznej.
6. Czynniki wpływające na skuteczność dezynfekcji.
7. Zasady dezynfekcji rąk.
8. Zasady postępowania aseptycznego.
9. Sterylizacja:

• definicja,
• cel,
• zasady wyboru metod sterylizacji,
• metody sterylizacji z podziałem na sterylizację fizyczną, chemiczną i mechaniczną,
• charakterystyka i mechanizmy działania metod sterylizacji na drobnoustroje,
• czynniki wpływające na skuteczność sterylizacji.

10. Kontrola procesu sterylizacji:

• wskaźniki fizyczne, chemiczne i biologiczne,
• zasady kontroli sterylizacji i interpretacja uzyskiwanych wyników.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Ćwiczenie 14.11.2024 – GRUPA 3

Podstawy antybiotykoterapii, metody badania lekowrażliwości drobnoustrojów na antybiotyki i chemioterapeutyki oraz interpretacja wyników, oporność bakterii na antybiotyki.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Znaczenie pojęć: wrażliwość mikrobiologiczna, minimalne stężenie hamujące (MIC), minimalne stężenie bakteriobójcze (MBC), szczep oporny (R), szczep wrażliwy (S), inokulum.
2. Podział metod badania lekowrażliwości: metody jakościowe; metody ilościowe; metody półilościowe.
3. Zasada, odczyt i interpretacja badania lekowrażliwości metodami:

• dyfuzyjnymi: metodą dyfuzyjno-krążkową, metodą z zastosowaniem pasków z gradientem stężeń antybiotyku, (np. E-testy),
• rozcieńczeniowymi: metodą rozcieńczeniową w bulionie, metodą rozcieńczeniową w agarze, metodą stężeń granicznych.

4. Zagadnienia wprowadzające do antybiotykoterapii:

• antybiotyk, chemioterapeutyk, terapia przeciwdrobnoustrojowa,
• terapia empiryczna, celowana, sekwencyjna, skojarzona,
• mechanizmy działania antybiotyków,
• efekty działania – dz. bakteriobójcze i bakteriostatyczne,
• skuteczność działania antybiotyków – parametry PK/PD: czas powyżej MIC (T>MIC), stężenie maksymalne do MIC (Cmax/MIC), wielkość pola pod krzywą (AUC24/MIC),
• efekt poantybiotykowy (PAE),
• spektrum działania antybiotyków i chemioterapeutyków,
• działania niepożądane.

5. Charakterystyka najważniejszych grup antybiotyków: β-laktamowe, aminoglikozydy, chinolony, makrolidy, tetracykliny, glikopeptydy, linkozamidy.
6. Oporność bakterii na antybiotyki: oporność mikrobiologiczna, szczep dziki, oporność naturalna, oporność nabyta.
7. Genetyczne podstawy oporności bakterii na antybiotyki: mutacja, koniugacja, transformacja, transdukcja.
8. Kliniczne fenotypy oporności: MRSA, ESBL, MBL, HLAR, MLSB, KPC, OXA-48, NDM.
9. Leki przeciwgrzybicze i przeciwwirusowe – grupy, przykłady leków, mechanizm działania, krótka charakterystyka.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Ćwiczenie 7.11.2024 – GRUPA 3

Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody hodowli drobnoustrojów (kolonia bakteryjna, grzybicza) i identyfikacji (właściwości biochemiczne, serologiczne, metody genetyczne).

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Podstawowe pojęcia: kolonia bakteryjna, podłoże hodowlane.
2. Podział podłóż hodowlanych ze względu na:

• konsystencję: stałe, półpłynne, płynne,
• skład i funkcje: naturalne, półsyntetyczne, sztuczne, proste, wzbogacone, specjalne, wybiórcze, wybiórczo-różnicujące, różnicujące, transportowe, transportowo-wzrostowe.

3. Zasady hodowli drobnoustrojów: zawartość składników odżywczych w podłożu, pH, ciśnienie osmotyczne, temperatura, potencjał oksydo-redukcyjny, czas inkubacji.
4. Typy wzrostu bakterii na podłożach płynnych.
5. Techniki posiewów na podłożach płynnych i stałych.
6. Morfologia kolonii bakteryjnej – cechy ją opisujące.
7. Badanie cech biochemicznych, metody immunologiczne w identyfikacji drobnoustrojów.
8. Inne metody identyfikacji: metody molekularne (PCR, real time-PCR), spektrometria MALDI-TOF.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominka Iwaniuk

TAKSONOMIA DROBNOUSTROJÓW

Ćwiczenie 24.10.2024 – GRUPA 3

Organizacja i regulamin ćwiczeń. Zasady BHP w laboratorium mikrobiologicznym. Zasady diagnostyki mikrobiologicznej – metody mikroskopowania, preparaty barwione metodą Grama, morfologia komórki bakteryjnej, grzybiczej.

Zagadnienia obowiązujące na ćwiczenie:

1. Rodzaje mikroskopów stosowanych w mikrobiologii. Zasada działania i zastosowanie.
2. Mikroskop świetlny – budowa i zasady posługiwania się podczas oglądania gotowych preparatów.
3. Znajomość pojęć: powiększenie, rozdzielczość, imersja.
4. Barwienie metodą Grama – zasada barwienia, wykonanie barwienia.
5. Morfologia drobnoustrojów (bakterie, grzyby):

• kształt,
• wielkość,
• sposób ułożenia w preparacie,
• sposób barwienia w metodzie Grama.

6. Podział metod barwienia: barwienie proste, złożone, pozytywne, negatywne, pozytywno-negatywne.
7. Budowa komórki prokariotycznej, eukariotycznej oraz wirusów.

Prowadzący zajęcia: mgr Dominika Iwaniuk

Pierwszy wykład z mikrobiologii dla I roku Położnictwa

odbędzie się 11.10.2024 r. (piątek) w godz. 17:00-18:30

w Auli 1.8 WNoZ.

Pozostałe wykłady będą odbywały się zgodnie z harmonogramem zajęć.

Pierwsze ćwiczenia odbędą się

24.10.2024 r. (czwartek) o godz. 14:00-15:30 grupa 3

20.11.2024 r. (środa) o godz. 16:15-17:45 grupa 1

20.11.2024 r. (środa) o godz. 17:45-19:15 grupa 2

Ćwiczenia będą odbywały się w sali dydaktycznej Zakładu Diagnostyki Mikrobiologicznej i Immunologii Infekcyjnej.

Na pierwsze ćwiczenia student obowiązany jest:

1. Przyjść ubrany w biały fartuch laboratoryjny z długimi rękawami oraz miękkie obuwie (obowiązuje bezwzględnie zmiana obuwia – nie wolno używać ochraniaczy na buty). Fartuch na czas wszystkich zajęć należy pozostawiać w szatni studenckiej zakładu (nie można używać na innych zajęciach). Fartuchy po skończonych zajęciach będą poddane utylizacji (na koniec semestru zimowego).
2. Wszyscy studenci przed rozpoczęciem zajęć oczekują całą grupą w holu przed zakładem.